前言
Pichia pastoris
中国药典
2025 版通则《生物制品生产用动物细胞基质的制备及质量控制》:明确要求对逆转录病毒(如 MuLV)进行物理滴度检测,作为细胞基质和病毒载体批次放行的关键指标。2025 版-人用基因治疗制品总论:对于病毒载体,应控制总颗粒数或基因组拷贝数等物理数量与感染性滴度或感染性颗粒数的比例。
《体外基因修饰系统药学研究与评价技术指导原则 (试行)》 明确需同时评估病毒颗粒总数(物理滴度)和感染性病毒颗粒数(生物滴度),确保工艺稳健性。

透射电子显微镜法,TEM
形态学金标准:唯一能直接观察病毒完整性的方法,常用于AAV空壳率检测。但统计样本量小(通常<1000颗粒),重现性差,不适于高通量场景。
纳米颗粒跟踪分析法,NTA 速度较快,提供粒径分布,操作相对简单;设备昂贵(超百万元),无法区分病毒与杂质颗粒。病毒计数仪法(Virus Counter)
高通量,动化,特异性较高、实时检测;设备昂贵,适用性限制:需要针对不同类型的病毒开发和优化相应的染色方法和仪器设置。
定量PCR法(qPCR/ddPCR)
极高灵敏度和特异性,高通量和快速;无法区分封装状态,不反映颗粒完整性,设备和试剂成本:qPCR和ddPCR仪器及相关试剂的成本相对较高。
酶联免疫吸附测定,ELISA
操作成熟,通量高,成本效益:相较于PCR和TEM,ELISA的单次检测成本通常较低;间接测量,准确性有限,灵敏度和线性范围局限,依赖抗体质量:检测结果的准确性和重复性高度依赖于抗体的特异性、亲和力以及批次间的一致性 高效液相色谱法,HPLC
高精度和高重复性;设备昂贵,操作复杂,通量较低,可能影响病毒活性:色谱柱的剪切力或填料的吸附作用可能对某些病毒的结构和活性造成影响。


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